分选原理
首先,用CD4磁珠对细胞进行磁性标记。然后,将细胞悬液加载到分选柱上,该柱放置在含分选器的磁场中。磁性标记的CD4+细胞被保留在柱内。未标记的细胞贯穿其中,因此,这一细胞部分的细胞被去除。将分选柱从磁场中移除之后,洗脱磁性标记的CD4+细胞作为阳性选择的细胞。
产品信息
[组分]
CD4 磁珠,人:与人CD4单抗偶联的磁珠(同型:小鼠 IgG1)。
[规格]
2ml,可分选109总细胞数,多达100次分选。
[保存形式]
保存在含有稳定剂和0.05%叠氮钠的溶液中。
使用方法
[试剂和设备]
缓冲液:含有pH7.2、0.5%BSA和 2mM EDTA的溶液。保持缓冲液冷却状态(2-8℃)。
分选柱和分选器:CD4+细胞可通过xM、xL柱(阳性选择)进行富集。也可以使用自动分选器进行去除。
(可选)用于流式细胞术分析的荧光偶联CD4抗体。
(可选)PI(碘化丙啶)或7-AAD 用于流式细胞术排除死亡细胞。
(可选)预分离过滤器用于去除细胞团块。
[1.样本制备]
当处理抗凝的外周血液时,应通过密度梯度离心法分离外周血单核细胞(PBMC)。
在处理组织时,用标准的制备方法制备单细胞悬浮液。
[2.磁性标记]
1.细胞计数。
2.300g离心10min,去除上清。
3.每 107细胞,用80μL缓冲液重悬。
4.每 107细胞,用20μLCD4 磁珠混匀。
5.(2-8)℃冰箱避光孵育15min(如果是在冰上孵育,需要增加孵育时间;如果是常温孵育,会增加非特异结合)。
6.(可选)加入染色抗体,在2-8℃避光孵育5分钟。
7.每107细胞,加入1-2mL缓冲液洗涤,300g离心10min,弃上清。
8.用 500μL 缓冲液重悬细胞。
[3.磁性分选]
1.将分选柱放置在分选器的磁场中。
2.将分选柱中加入适量缓冲液,充分湿润分选柱(xM: 500 μL;xL:3 mL)
3.将细胞悬液加到分选柱中。
4.结合磁珠的细胞会被吸附到分选柱上,没有结合的细胞会顺着液体流下来。加适量的缓冲液,待液体全部流尽,再加入适量缓冲液,一共洗3次。收集总流出物。这是未标记的细胞。(xM:3X500μL;xL:3x3mL)
5.将分选柱从分选器中取出,并将其放在合适的收集管上。
6.加适量的缓冲液到分选柱中,迅速用塞子推下,得到就是目的细胞。(xM:1mL;xL:5mL)
7.(可选)为了提高标记细胞的纯度,洗脱部分可以在第二个xM或xL 柱上富集。使用新的分选柱重复步骤1至6中描述的磁选过程。
储存条件
在2-8℃条件下避光保存,请勿冷冻。有效期见试剂外标签。
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